مجله علوم آبزی پروری

مجله علوم آبزی پروری

مقایسه تأثیر پربیوتیک‌های تجاری Ultera A-max و Liquid Celmanax بر عملکرد‌های رشد، شاخص‌های بیوشیمیایی عصاره بدن و مدت زمان زنده‌مانی در برابر تنش‌های محیطی در بچه‌ماهیان آمور (Ctenopharyngodon idella Linnaeus, 1758 )

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران.
چکیده
مطالعه حاضر با جهت بررسی تأثیر دو پربیوتیک تجاری ایمکس اولترا و سلماناکس مایع بر پارامترهای رشد، شاخص‌های بیوشیمیایی عصاره بدن و مدت زمان زنده‌مانی نوزادان ماهی آمور در برابر استرسهای محیطی انجام شد. بدینمنظور تعداد 1200 نوزادان ماهی آمور با میانگین وزن اولیه 12/10±625/15 میلی‌گرم (انحراف معیار± میانگین) تهیه و به آزمایشگاه منتقل شدند. نوزادان ماهی به مدت یک هفته در محیط آزمایشگاه با شرایط جدید سازگار شدند. سپس نوزادان ماهی در قالب طرح کاملاً تصادفی با شش تیمار آزمایشی و یک گروه شاهد (فاقد پری بیوتیک) در قالب طرح کاملاً تصادفی در سه سطح از پری­بیوتیک ایمکس اولترا (1، 2 و 3 گرم بر کیلوگرم) به‌ترتیب تحت عناوین A1، A2 و A3 و سه سطح از پری­بیوتیک سلماناکس مایع (1، 2 و 3 میلی‌لیتر بر کیلوگرم) به‌ترتیب تحت عناوین C1، C2 و C3 با سه تکرار برای هر تیمار  طراحی شده و در 21 مخزن مدور از جنس پلی‌اتیلن با حجم آبگیری 25 لیتر با تراکم 50 قطعه بچه‌ماهی در هر مخزن به‌مدت 45 روز با جیره‌های آزمایشی تغذیه شدند. نتایج نشان داد استفاده از محصولات تجاری ایمکس اولترا و سلماناکس مایع باعث افزایش معنی‌داری در پارامترهای رشد ماهیان در تیمارهای آزمایشی به‌خصوص در سطح 3 گرم در هر کیلوگرم از پربیوتیک ایمکس اولترا در مقایسه با تیمار شاهد گردید (P<0.05). همچنین شاخصهای بیوشیمیایی عصاره بدن شامل پروتئین تام، گلوکز، AST و ALT نیز در تیمارهای آزمایشی حاوی پربیوتیک در مقایسه با تیمار شاهد اختلاف معنی‌داری نشان دادند.  مدت‌زمان زنده‌مانی بچه‌ماهیان در برابر استرس‌های محیطی نیز در تمام تیمارهای تحت تأثیر پربیوتیک بالاتر از گروه شاهد بود. همچنین میزان مقاومت و مدت زنده‌مانی نوزادان ماهی در مقابله با استرس‌های pH اسیدی، بازی، دما  و آمونیاک در تیمارهای آزمایشی در مقایسه با گروه شاهد افزایش معنیداری داشت (P<0.05). براساس نتایج این تحقیق، پری­­بیوتیک ایمکس اولترا با دارا بودن  اولیگوساکارید مانان (MOS) به‌دست آمده از دیواره سلولی مخمر نانوایی (Saccharomyces cerevisiae) با افزودن 1 تا 3 گرم از آن در مقایسه با سطوح مشابه از پری­بیوتیک سلماناکس مایع به‌دست آمده از فرآیند هیدرولیز آنزیمی دیواره مخمر نانوایی با دارا بودن بتا گلوکان و اولیگوساکارید مانان، به جیره غذایی نوزادان بچه‌ماهیان آمور باعث بهبود پارامترهای رشد، شاخص‌های بیوشیمیایی عصاره بدن و مدت ‌زمان مقاومت در برابر استرس‌های محیطی شده و به‌عنوان یک مکمل پری­بیوتیکی در پرورش اولیه این ماهی پیشنهاد می‌گردد.
کلیدواژه‌ها

موضوعات


عنوان مقاله English

Investigating the effect of two commercial prebiotics A-Max Ultra and Celmanax liquid on some differential growth parameter, biochemical idices of body extract and resistance to environmental stresses in Grass Carp (Ctenopharyngodon idella Linnaeus, 1758) larvae

نویسندگان English

Sedighe Khalili
Hojatollah Jafaryan
Hossein Adineh
Mohamad Farhangi
Department of Fisheries, Faculty of Natural Resources, Gonbad-e Kavous University, Golestan, Iran.
چکیده English

The present study was conducted to investigate the effect of two commercial prebiotics, A-max Ultra and Celmanax Liquid, on growth parameters, biochemical indices of body extract, and survival time of Grass Carp fry against environmental stresses. For this purpose, 1200 Grass Carp fry with an average initial weight of 625.15±10.12 mg (mean±standard deviation) were prepared and transferred to the laboratory. The fish fry were acclimated to the new conditions in the laboratory for one week. Then, fish fry were randomly assigned to six experimental treatments and a control group (without prebiotic) in a completely randomized design with three levels of A-max Ultra prebiotic (1, 2, and 3 g/kg) respectively under the headings A1, A2, and A3 and three levels of liquid Celmanax prebiotic (1, 2, and 3 ml/kg) respectively under the headings C1, C2, and C3 with three replications for each treatment and were fed experimental diets in 21 circular polyethylene tanks with a water intake volume of 25 liters at a density of 50 fry per tank for 45 days. The results showed that the use of commercial products Imax Ultra and liquid Celmanax caused a significant increase in fish growth parameters in experimental treatments, especially at the level of 3 g/kg of A-max Ultra prebiotic compared to the control treatment (P<0.05). Also, biochemical indices of body extract including total protein, glucose, AST and ALT also showed significant differences in experimental treatments containing prebiotics compared to the control treatment (P<0.05). The survival time of juvenile fish against environmental stresses was also higher in all treatments affected by prebiotics than in the control group (P<0.05). Also, the resistance and survival time of fish neonates in dealing with acidic pH, alkalinity, temperature and ammonia stresses in experimental treatments compared to the control group increased significantly (P<0.05). Based on the results of this study, the addition of 1 to 3 grams of the prebiotic A-max Ultra, containing mannan oligosaccharide (MOS) obtained from the cell wall of baker's yeast (Saccharomyces cerevisiae), to the diet of Amur carp fry improved growth parameters, biochemical indices of body extract, and duration of resistance to environmental stresses, and is recommended as a prebiotic supplement in the initial rearing of this fish, compared to similar levels of the liquid prebiotic Celmanax, obtained from the enzymatic hydrolysis process of baker's yeast cell wall, containing beta-glucan and mannan oligosaccharide.

کلیدواژه‌ها English

A-max Ultra
Prebiotic
Celmanax liquid
Biochemical indices
Ctenopharyngodon idella
احمدی‌فر ا.، جلالی م.ع.، سوداگر م.، آذری‌تاکامی ق.، محمدی زرج آباد ا. 1388. اﺛﺮات آکﻮاک ارگﻮﺳﺎن (AquaVac Ergosan) بر ﻣﯿﺰان رﺷﺪ، ﺑﺎزﻣﺎﻧﺪگی و ﺷﺎﺧﺺﻫﺎی ﻣﺮﺑﻮط ﺑﻪ ﺧﻮن در ﻓﯿﻞﻣﺎﻫﯿﺎن ﺟﻮان (Huso huso). مجله کشاورزی و منابع طبیعی، 16(1).
اکرمی ر.، قلیچی ا.، قرایی ا. 1389. ﻛﺎرﺑﺮد پربیوتیک‌ها در آﺑزی‌پروری. مجله شیلات، 4(1).
بیواره م.ر.، جعفریان ا. 1395. تعیین عملکرد پارامترهای رشد، بازماندگی و مقاومت در برابر استرس‌های محیطی در لاروهای کپور معمولی F1 (Cyprinus carpio. L.) تغذیه شده با سطوح مختلف مخمر Saccharomyces cerevisiae. علوم تکثیر و آبزی‌پروری. 4(10): 30-11.
رنجدوست م.، جعفریان ح.، هرسیج م.، قلی‌پور کنعانی ح. 1396. اثر پری‌بیوتیک سلماناکس بر پارامترهای خون بچه‌ماهیان کپور معمولی (Cyprinus carpio Linnaeus, 1758) در برابر تنش حمل و نقل. محیط‌زیست جانوری. 9(4): 214-207.
رنجدوست م.، جعفریان ح.، هرسیج م.، قلی‌پور کنعانی ح. 1397.تأثیر پری‌بیوتیک سلماناکس و پنج گونه از پروبیوتیک‌های باسیلی بر کاهش استرس حمل و نقل کپور معمولی در شوری‌های مختلف. علوم آبزی‌پروری. 6(9): 50-40.
شعاعی ر.، اکرمی ر.، قبادی ش.، رازقی منصور م. امانی دنجی ک. 1391. تأثیر پربیوتیک مانان الیگوساکارید و بتا 1و3 گلوکان (تکنوموس) بر برخی پارامترهای خون‌شناسی و بیوشیمی سرم خون بچه‌ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله بهره‌برداری و پرورش آبزیان. 1(1): 54-41.
شیخ الاسلامی ا.، یوسفیان م.، یاوری و.، صفری ر.، قیاسی م. 1390. بررسی تأثیر پری‌بیوتیک اینولین بر فاکتورهای سیستم ایمنی و مقاومت ماهی قزل‌آلای رنگین کمان (Walbaum, 1972)  Oncorhynchus mykissدر برابر باکتری بیماریزای استرپتوکوک. زیست‌شناسی ایران، 24(2): 312-303.
کوهساریان ش.، جعفریان ح.، پاتیمار ر.، آدینه ح. 1399. تاثیر پربیوتیک تجاری ایمکس اولترا بر عملکرد رشد، شاخص های خون‌شناسی و ایمنی غیر اختصاصی ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss Walbaum, 1792). شیلات. 73(1): 101-114.
محمودیان ا.، کرامت امیرکلایی ع.، اکرمی ر.، بهلکه ا. 1394. بررسی اثر پری بیوتیک آلفامیون و پروبیوتیک پروتکسین به صورت انفرادی و ترکیبی بر رشد بچه ماهیان کپور  معمولی (Cyprinus carpio Linnaeus, 1758). پژوهش‌های ماهی‌شناسی کاربردی. 3(4): 93-104.
Ai Q., Mai K., Tan B., Xu W., Duan Q., Ma H., Zhang L. 2006. Replacement of fish meal by meat and bone meal in diets for large yellow croaker (Pseudosciaena crocea). Aquaculture 260, 255-263.
Akramai R., Ebrahimi A., Shamloofar M., Razaghi Mansour, M. 2014. The Effect of prebiotic mannan oligosaccharide on the rrowth performance, survival and resistance rate of rainow trout larvae (ncorhynchus mykiss Wabaum, 1792) against environmental stress. Journal of Applied Ichthyological Research, 2(3):29-42.
Akrami R., Iri Y., Khoshbavar Rostami H.A., Razeghi Mansour M. 2013. Effect of dietary supplementation of fructooligosaccharide (FOS) on growth performance, survival, lactobacillus bacterial population and hemato-immunological parameters of stellate sturgeon (Acipenser stellatus) juvenile. Fish and Shellfish Immunology 35, 1235-1239.
Akrami R., Rahnama B., Chitsaz H., Razeghi Mansour M. 2015.  Effects of dietary inulin on growth performance, survival, body composition, stress resistance and some hematological parameters of Gibel carp juveniles (Carassius auratus gibelio). Iranian Journal of Fisheries Sciences 14(4), 1072- 1082.
Andrews S.R., Sahu N.P., Pal A.K., Kumar S. 2009. Haematological modulation and growth of Labeo rohita fingerlings: effect of dietary mannan oligosaccharide, yeast extract, protein hydrolysate and chlorella. Aquaculture Research 41, 61-69.
Atar H.H., Ates M., 2009. The effects of commercial diet supplemented with mannanoligosaccharide (MOS) and vitamin B12 on the growth and body composition of the carp (Cyprinus carpio L. 1758). Journal of Animal and Veterinary Advances 8, 2251-2255.
Bivareh M.R., Jafaryan H., Jafaryan S. 2015. The effect of A-Max (saccharomyces cerevisiae culture concentrate) as a promoter for enhancement ofr growth and feeding oerformance of Common carp (Cyprinus carpio) fingerling. International conference on sustainable development, strategies and challenges with a focus on Agriculture, Natural Resources, Environment and Tourism, 24-26 Feb. Tabriz, Iran. 1-8.
Ching J.J., Shuib A.S., Majid N.A., Taufek N.M. 2020. Immunomodulatory activity of β-glucans in fish: Relationship between β-glucan administration parameters and immune response induced. Aquaculture Research 52, 1824-1845.
De Silva S.S., Anderson T.A. 1995. Fish Nutrition in Aquaculture, Chapman & Hall, 2-6 Boundary Row, London SE1 8HN, UK. 318 p.
Djauhari R., Widanarni S., Agus Suprayudi M., Muhammad Zairin Jr. 2017. Growth Performance and Health Status of Common Carp (Cyprinus carpio) Supplemented with Prebiotic from Sweet Potato (Ipomoea batatas L.) Extract. Pakistan Journal of Nutrition 16(3), 155-163.
Dobsikova, R., Svobodova, Z., Blahova, J., Modra, H. and Velisek, J. 2009. The effect of transport on biochemical and haematological indices of common carp (Cyprinus carpio L.). Czech Journal of Animal Sciences 54, 510-518.
Eagderi S., Mouludi-Saleh A., Esmaeli H.R., Sayyadzadeh G., Nasri M. 2022. Freshwater lamprey and fishes of Iran; a revised and updated annotated checklist-2022. Turkish Journal of Zoology 46(6), 500-522.
Ebrahimi G.H., Ouraji H., Khalesi M.K., Sudagar M., Barari A., Zarei Dangesaraki M., Jani Khalili K.H. 2012. Effects of a prebiotic, Immunogen®, on feed utilization, body composition, immunity and resistance to Aeromonas hydrophila infection in the common carp Cyprinus carpio (Linnaeus) fingerlings. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition 96, 591-599.
Ferket P.R. 2004. Alternatives to antibiotics in poultry production: responses, practical experience and recommendations. In Nutritional Biotechnology in the Feed and Food Industries, eds. Lyons TP and Jacques KA, pp. 57-67. Nottingham University Press, Nottingham, UK.
Forster I. 1999. A note on the method of calculating digestibility coefficients of nutrients provided by single ingredients to feeds of aquatic animals. Aquaculture Nutrition 5, 143-145.
Gatlin D.M. 2002. Nutrition and fish health. In: Fish Nutrition. (ed. By J.E Halver and R.W. Hardy), pp. 671-702, Academic Press, SanDiego, CA.
Ghiasi F., Mirzargar S.S., Salar Amoli J., Bahonar A., Ebrahimzadeh Mousavi H.A. 2010. Study on Hematology and Serum Biochemistry of Common Carp (Cyprinus carpio) After Low Cadmium Concentration Exposure. Journal of Veterinary Research 65, 61-66.
Ghorbani A., Salamatdoustnobar R., Ghaem Maghami S.S., Motallebi V. 2012. The effect of different levels of prebiotic on the length of fingerling rainbow trout. African Journal of Biotechnology 11(36).
Gibson G.R., Roberfroid M.B. 1995. Dietary modulation of the colonic microbiota: introducing the concept of prebiotics. Journal of Nutrition 125, 1401-1412.
Hevroy E.M., Espe M., Waagbo R., Sandness K., Rund M., Hemer G.I. 2005. Nutrition utilization in Atlantic salmon (Salmo salar) fed increased level of fish protein hydrolysate during a period of fast growth. Aquaculture Nutrition 11, 301-313.
Hoseinifar S.H., Zare A.S. 2008. Probiotics, Prebiotics and synbiotics in Aquaculture: A review. Proceeding of International Training Course on fish Nutrition and disease, 5 September, Ghaemshhr, Iran, 23 p.
Iri Y., Hafezieh M., Haghpanah A., Rostami H.K., Ghareve B., Kor A.V., Kor N.M., Lakzaie F. 2015. An assessment the effect of Fructo-oligosaccharide on growth performance, survival and hematological factors in sturgeon juvenile (Acipenser sttellatus). Iranian Scientific Fisheries Journal 24(1), 97-108.
Jafaryan H., Soltani M., M. Taati A., Nazarpoor Morovat R. 2011. The comparsion of performance of isolated sturgeon gut bacillus (Acipenser persicus and Huso huso) with commercial microbial products on growth and survival of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) larvae. Journal of Veterinary Research 66(1): 39-46.
Kühlwein H., Emery M.J., Rawling M.D., Harper G.M., Merrifield D.L., Davies S.J. 2013. Effects of a dietary β-(1, 3) (1, 6)-D-glucan supplementations on intestinal microbial communities and intestinal ultrastructure of mirror carp (Cyprinus carpio L.). Journal of Applied Microbiology 115, 1091-1106.
Kühlwein H., Merrifield D.L., Rawling M.D., Foey A.D., Davies S.J. 2014. Effects of dietary β-(1, 3) (1, 6)-D-glucan supplementations on growth performance, intestinal morphology and haemato-immunological profile of mirror carp (Cyprinus carpio L.). Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition 98, 279-289.
Li J.Q. Tan B.P. Mai K.S. 2009. Dietary probiotic Bacillus OJ and isomal to oligosaccharides influence the intestine microbial populations, immune responses and resistance to white spot syndrome virus in shrimp (Litopenaeus vannamei). Aquaculture 291, 35-40.
Li P., Gatlin D. M. 2004. Dietary brewer's yeast and the prebiotic GroBiotic TM AE influence growth performance, immune responses and resistance of hybrid striped bass (Moron echrysops × M. saxatilis) to (Streptococcus iniae) infection. Aquaculture 231(4), 445-456.
Mahajer Astar Abadi M., Vahabzadeh H., Zamini A., Soudagar M., Ghorbani Nasr Abadi R. 2010. The effect of diet on the growth and survival of probiotic immunogen in young farmed sturgeon (Huso huso Linne, 1758). Journal of Fisheries Science Islamic Azad University 2(4), 38-44.
Manning T.S., Gibson G.R. 2004. Prebiotics. Best Practice and Research Clinical Gastroenterology 18: 287-298.
Martin O., Okolie P. 2012. N-nitrosodimethylamine (NDMA), Liver Function Enzymes, Renal Function Parameters and Oxidative Stress Parameters: A Review. British Journal of Pharmacology and Toxicology 3(4), 165-176.
Nazari E., Keramat Amirkolaie A., Karimzadeh S. 2016. Effect of different Alphamune levels in artificial diet on growth parameters, digestibility and enzyme activity of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum 1792). Iranian Journal of Fisheries Sciences 15(3), 1055-1066.
Nazari Juibari E. 2013. Effect of probiotic L-famyvn on growth performance, nutrient digestibility and digestive enzyme activities of young rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). M.Sc. Thesis, Sari University of Agricultural Sciences and Natural Resources, 87 p.
Postlethwaite E., Mcdonald D. 1995. Mechanisms of Na+ and C- regulation in freshwater-adapted rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) during exercise and stress. Experimental Biology 198, 295-304.
Raasta‑Shoaei S., Yeganeh A., Kari A., Soltani M. 2012. Effects of dietary prebiotic mannan‑oligosaccharide and β‑1,3‑glucan (TechnoMos) on growth performance and serum biochemical parameters of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Iranian Journal of Fisheries Sciences. Iranian Journal of Fisheries Sciences 11, 825-837.
Racicot J.G., Gaudet M., Leray C. 1975. Blood and liver enzymes in rainbow trout (Salmo gairdneri) with emphasis on their diagnostic use: study of CCl4 toxicity and a case of Aeromonas infection. Journal of Fish Biology 7, 825-835.
Rahnama B., Akrami R., Chitsaz H. 2013. Effect of dietary prebiotic inulin on growth performance, survival, body composition and salinity stress resistance in Carassius auratus gibelio. Breeding & Aquaculture Sciences Journal 1, 55-70.
Řehulka J., Minařik B., Cink D., Žalak J. 2011. Prebiotic Effect of Fructo– Oligosaccharides on Growth and Physiological State of Rainbow Trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Acta universitatis agriculturae et silviculturae mendelianae brunensis LIX, 27, 227-236.
Salamatdoust Nobar R., Ghorbani A., GhaemMaghami S.S., Motalebi V. 2011. Effects of prebiotic on the fingerling rainbow trout performance parameters (Oncorhynchus mykiss). World Journal of Fish and Marine Sciences 3(4), 305- 307.
Salze G., McLean E., Schwarz M.H., Craig S.R. 2008. Dietary mannan oligosaccharide enhances salinity tolerance and gut development of larval cobia. Aquaculture 274, 148-152.
Sang H.M., Trung K.Y.L., Fotedar R. 2009. Dietary supplementation of mannan oligosaccharide improves the immune responses and survival of marron, Cherax tenuimanus (Smith, 1913) when challenged with different stressors. Fish and Shellfish Immunology 27, 341-348.
Shahsavani D., Mohri M., Kanani H.G. 2010. Determination of normal values of some blood serum enzymes in Acipenser stellatus pallas. Fish Physiology and Biochemistry 36, 39-43.
Soleimani N., Hoseinifar S.H., Merrifield D.L., Barati M., Hassan Abadi Z. 2012. Dietary supplementation of fructooligosaccharide (FOS) improves the innate immune response, stress resistance, digestive enzyme activities and growth performance of Caspian roach (Rutilus rutilus) fry. Fish and Shellfish Immunology 32, 316-21.
Stoskopf M.K. 1993. Fish medicine. W.B. Sannders company, Philadelphia. P.A.
Ta'ati R., Soltani M., Bahmani M., Zamini A.A. 2011. Growth performance, carcass composition and immunophysiological indices in juvenile great sturgeon (Huso huso) fed on commercial prebiotic, Immunoster. Iranian Journal of Fisheries Sciences 10, 324-335.
Tajdar Nasrabadi M., Akrami R. 2013. Single or combined effects of of fructo- and mannan oligosaccharide supplements on growth performance, survival, body composition and resistance rate of juvenile Roach Rutilus rutilus caspicus. Journal of Oceanography 4, 33-44.
Torrecillas S. 2011. Effect of dietary mannan oligosaccharides (MOS) on European Sea bass (Dicentrarchus labrax) Juvenile Culture. Thesis for degree of Doctor of Philosophy University of Las Palmas De Gran Canaria. 217 p.
Tukmechi A., Bandboni M. 2014. Effects of Saccharomyces cerevisiae supplementation on immune response, hematological parameters, body composition and disease resistance inrainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum, 1792). Journal of Applied Ichthyology 30, 55-61.
Zhang J., Liu Y., Tian L., Yang H., Liang G., Xu D. 2012. Effects of dietary mannan oligosaccharide on growth performance, gut morphology and stress tolerance of juvenile Pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei. Fish and Shellfish Immunology 33)4(, 1027-1032.

مقالات آماده انتشار، پذیرفته شده
انتشار آنلاین از 01 مهر 1404